一、用途及試驗原理
用於支原體分離和培養的基礎培養基。
䏡腖、蛋白腖、牛肉浸粉、牛心浸粉提供氮源、維生素、氨基酸和生長因子;氯化鈉可維持均衡的滲透壓。
二、培養基配方(g/L)
䏡腖 |
1.0 |
蛋白腖 |
10.0 |
牛肉浸粉 |
1.0 |
牛心浸粉 |
4.0 |
氯化鈉 |
5.0 |
pH值7.6-8.0(25℃) |
三、試驗方法
1、稱取本品21 g,加熱溶解於700 mL蒸餾水中,121℃高壓滅菌15分鍾,冷至50℃-60℃時加入300 mL添加劑(包括200 mL馬血清和100 mL除菌的新鮮酵母浸液),混勻,備用。
新鮮酵母浸出液製備方法:取500 g鮮酵母或250 g酵母幹粉,加入至1.5 L雙蒸水中,攪拌均勻,充分溶解後煮沸15 min,快速冷卻,4000 r/min離心15 min,取上清液,再煮沸15 min,冷卻後用0.22 μm微孔濾膜過濾除菌或116℃高壓滅菌20 min。
為簡化操作,可使用酵母浸粉配製的溶液替代新鮮酵母浸液,酵母浸粉溶液的配製方法為,將5 g酵母浸粉添加至100 mL蒸餾水中混勻,可替代100 mL新鮮酵母浸出液。
2、製備質控菌株,接種至培養基中,做10倍係列稀釋,稀釋至10-9,並做空白對照。
3、放置於36℃±1℃恒溫培養箱中,微需氧培養7-14天。
四、試驗注意事項
1、培養肺炎支原體時,培養基需額外添加葡萄糖(為可發酵的糖);培養口腔支原體時,培養基需額外添加精氨酸(為可水解的氨基酸);進行靈敏度試驗時需額外添加酚紅(指示劑)。
2、由於馬血清為深黃色,培養基添加馬血清後,會幹擾結果判定,為解決這一問題,可將培養基的pH調至偏上限,如pH值為7.9。
3、若使用非一次性試管等容器進行試驗,容器使用前應使用蒸餾水衝洗幹淨,確保無洗滌液等殘留物,以免增加試驗的不確定性或汙染。
4、滅菌結束後,試管口會有水珠,在進行梯度稀釋時,水珠很容易與空氣中的細菌接觸以致汙染,因此,試管口應灼燒至幹燥,膠塞也需過火,振蕩操作後,若培養基接觸到膠塞,還需再次進行灼燒操作。
5、調節pH時,使用的酸堿試劑均應是滅菌後的。
6、支原體培養前應使用封口膜封口,可提供微需氧環境以及降低汙染的風險。
五、質控結果
接種以下質控菌株,放置於36℃±1℃恒溫培養箱中,需氧培養7~14天。肺炎支原體、口腔支原體分別培養至11、5天的試驗結果分別如圖1、2所示。
質控菌株 |
菌株編號 |
接種量(CFU) |
生長情況 |
其它特征 |
肺炎支原體 |
ATCC 15531 |
/ |
+++ |
10-9稀釋度變黃色 |
口腔支原體 |
ATCC 23714 |
/ |
+++ |
10-4稀釋度變粉色 |
圖1 PPLO肉湯培養基培養肺炎支原體11天的靈敏度
圖2 PPLO肉湯培養基培養口腔支原體5天的靈敏度
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