清潔的玻璃器皿是實驗得到正確結果的先決條件，因此，玻璃器皿的清洗是實驗前的一項重要準備工作。清洗方法根據實驗目的、器皿的種類、所盛放的物品、洗滌劑的類別和沾汙程度等的不同而有所不同。現分述如下：
1．新玻璃器皿的洗滌方法
新購置的玻璃器皿含遊離堿較多，應在酸溶液內先浸泡數小時。酸溶液一般用2％的鹽酸或洗滌液（見本小節“3”）。浸泡後用自來水衝洗幹淨。
2．使用過的玻璃器皿的洗滌方法
(1)試管、培養皿、三角燒瓶、燒杯等可用瓶刷或海綿沾上肥皂或洗衣粉或去汙粉等洗滌劑刷洗，然後用自來水充分衝洗幹淨。熱的肥皂水去汙能力更強，可有效地洗去器皿上的油汙。洗衣粉和去汙粉較難衝洗幹淨而常在器壁上附有一層微小粒子，故要用水多次甚至10次以上充分衝洗，或可用稀鹽酸搖洗一次，再用水衝洗，然後倒置於鐵絲框內或有空心格子的木架（圖Ⅰ-10）上，在室內晾幹。急用時可盛於框內或搪瓷盤上，放烘箱烘幹。
玻璃器皿經洗滌後，若內壁的水是均勻分布成一薄層，表示油垢完全洗淨，若掛有水珠，則還需用洗滌液浸泡數小時，然後再用自來水充分衝洗。
裝有固體培養基的器皿應先將其刮去，然後洗滌。帶菌的器皿在洗滌前先浸在2％煤酚皂溶液（來蘇爾）或0．25％新潔爾滅消毒液內24小時或煮沸半小時，再用上法洗滌。帶病原菌的培養物最好先行高壓蒸汽滅菌，然後將培養物倒去，再進行洗滌。
盛放一般培養基用的器皿經上法洗滌後，即可使用，若需精確配製化學藥品，或做科研用的精確實驗，要求自來水衝洗幹淨後，再用蒸餾水淋洗三次，晾幹或烘幹後備用。
(2)玻璃吸管吸過血液、血清、糖溶液或染料溶液等的玻璃吸管（包括毛細吸管），使用後應立即投入盛有自來水的量筒或標本瓶內，免得幹燥後難以衝洗幹淨。量筒或標本瓶底部應墊以脫脂棉花，否則吸管投入時容易破損。待實驗完畢，再集中衝洗。若吸管頂部塞有棉花，則衝洗前先將吸管尖端與裝在水龍頭上的橡皮管連接，用水將棉花衝出，然後再裝入吸管自動洗滌器內衝洗，沒有吸管自動洗滌器的實驗室可用衝出棉花的方法多衝洗片刻。必要時再用蒸餾水淋洗。洗淨後，放搪瓷盤中晾幹，若要加速幹燥，可放烘箱內烘幹。
吸過含有微生物培養物的吸管亦應立即投入盛有2％煤酚皂溶液或0．25％新潔爾滅消毒液的量筒或標本瓶內，24小時後方可取出衝洗。
吸管的內壁如果有油垢，同樣應先在洗滌液內浸泡數小時，然後再行衝洗。
(3)載玻片與蓋玻片用過的載玻片與蓋玻片如滴有香柏油，要先用皺紋紙擦去或浸在二甲苯內搖晃幾次，使油垢溶解，再在肥皂水中煮沸5—10分鍾，用軟布或脫脂棉花擦試，立即用自來水衝洗，然後在稀洗滌液中浸泡0．5—2小時，自來水衝去洗滌液，最後用蒸餾水換洗數次，待幹後浸於95％酒精中保存備用。使用時在火焰上燒去酒精。用此法洗滌和保存的載玻片和蓋玻片清潔透亮，沒有水珠。
檢查過活菌的載玻片或蓋玻片應先在2％煤酚皂溶液或0．25％新潔爾滅溶液中浸泡24小時，然後按上法洗滌與保存。
3．洗滌液的配製與使用
（1）洗滌液的配製洗滌液分濃溶液與稀溶液兩種，配方如下：
濃溶液 重鉻酸鈉或重鉻酸鉀（工業用） 50g
自來水 150ml
濃硫酸（工業用） 800ml
稀溶液 重鉻酸鈉或重鉻酸鉀（工業用） 50g
自來水 850ml
濃硫酸（工業用） 100ml
配法都是將重鉻酸鈉或重鉻酸鉀先溶解於自來水中，可慢慢加溫，使溶解，冷卻後徐徐加入濃硫酸，邊加邊攪動。
配好後的洗滌液應是棕紅色或桔紅色。貯存於有蓋容器內。
（2）原理 重鉻酸鈉或重鉻酸鉀與硫酸作用後形成鉻酸（chro-mic acid），酪酸的氧化能力極強，因而此液具有極強的去汙作用。
（3）使用注意事項 （a）洗滌液中的硫酸具有強腐蝕作用，玻璃器皿浸泡時間太長，會使玻璃變質，因此切忌到時忘記將器皿取出衝洗。其次，洗滌液若沾汙衣服和皮膚應立即用水洗，再用蘇打水或氨液洗。如果濺在桌椅上，應立即用水洗去或濕布抹去；（b）玻璃器皿投入前，應盡量幹燥，避免洗滌液稀釋；（c）此液的使用僅限於玻璃和瓷質器皿，不適用於金屬和塑料器皿；（d）有大量有機質的器皿應先行擦洗，然後再用洗滌液，這是因為有機質過多，會加快洗滌液失效，此外，洗滌液雖為很強的去汙劑，但也不是所有的汙跡都可清除；（e）盛洗滌液的容器應始終加蓋，以防氧化變質；（f）洗滌液可反複使用，但當其變為墨綠色時即已失效，不能再用。
上一篇：微生物學實驗室常用的器皿種類、要求與應用
下一篇：微生物實驗空玻璃器皿的包裝
