【摘要】 目的探討酵母菌發酵對川烏、附子(黑順片)中總生物堿含量的影響。方法采取酵母菌直接發酵和以麵粉為基質進行酵母菌擴增,之後再與川烏、附子混合兩種發酵方法,水煎提取、測定總生物堿含量和浸膏得率。結果酵母菌直接發酵生物堿含量最高,酵母菌+麵粉再與川烏、附子混合發酵後生物堿含量略低,但浸膏得率最高,兩種方法發酵均高於傳統水提法。結論酵母直接發酵川烏、附子能明顯提高總生物堿含量和浸膏得率。
【關鍵詞】 川烏; 附子(黑順片); 酵母發酵; 總生物堿; 浸膏得率
川烏為毛茛科烏頭屬植物烏頭的幹燥主根, 具有祛風除濕,散寒止痛的功效,附子為子根,具有回陽救逆,助陽補火,散寒止痛的作用。川烏、附子兩藥材同源,均為臨床常用品。川烏、附子的主要成分之一生物堿是祛風除濕、散寒止痛的有效成分,同時又是導致中毒的成分,由於烏頭堿致毒事件頻頻發生,製約了烏頭屬中藥的應用[1],《中國藥典》2005 版規定川烏、草烏的用量減至
1 材料與儀器
1.1 材料製川烏、附子(黑順片)均購自河北安國長安藥材行,經聯合大學生物化學工程學院製藥工程教研組鑒定為正品;安琪高活性幹酵母,安琪酵母股份有限公司產品;蛋白腖、酵母浸粉、瓊脂粉,北京奧博星生物技術有限責任公司產品;葡萄糖,北京化學試劑公司產品;溴甲酚綠(BCG)試液依照2005年版《中國藥典》配製;烏頭堿對照品,中國藥品生物製品檢定所產品,批號:11072-200410。
1.2 儀器超級潔淨工作箱DL-CJ-2ND(北京東聯哈爾儀器製造有限公司);立式壓力整齊滅菌器LS
2 方法與結果
2.1 麵粉發酵粉碎川烏、黑順片至1020目,以少量水浸泡川烏、黑順片粉末。取幹酵母
2.2 酵母菌發酵YPD液體培養基:蛋白腖
YPD固體培養基:蛋白腖
酵母菌活化培養:固體培養基高壓滅菌後,倒入平板,23 h凝固,待用。用少量無菌水溶解幹酵母成膏狀,挑取膏狀酵母,接種後放入
酵母菌擴大培養:挑取已活化的菌體,深入液體培養基中輕輕攪拌,於
川烏、黑順片發酵:無菌條件下,將活化培養的200 ml酵母菌懸液分別與高壓滅菌的川烏
2.3 提取分別取發酵前後的川烏、黑順片各
2.4 總生物堿檢測
1-樣品;2-標準品;3-陰性樣品
圖1 烏頭堿-BCG紫外可見光譜
2.5 幹浸膏含量測定分別取發酵前後的川烏、黑順片各
2.6 川烏和附子中總生物堿含量測定精密量取按“2.3”項下製備的9種提取液,按“
3 討論
微生物發酵已成為中藥現代化研究的重要內容之一,利用中草藥發酵已從單味藥涉及到複方且取得顯著成果,成藥片仔癀即是用麝香、牛黃、蛇膽、三七等名貴中藥的微生物發酵物,為臨床退黃、消腫的良藥[5]。酵母無毒,生長繁殖快,培養基和培養條件簡單,發酵能力強,因此本研究以川烏和黑順片為基質進行酵母菌發酵,結果表明酵母菌發酵川烏+附子總生物堿含量(0.39 mg/g)明顯高於其它組合,而兩種發酵方法均高於未發酵的對照組,由此推斷,酵母發酵可使川烏、附子中總生物堿含量增加。微生物可利用中藥材為營養進行分裂、生長、代謝和繁殖,在代謝過程中分泌蛋白酶、纖維素酶、半纖維素酶、果膠酶、澱粉酶等幾十種胞外酶進入培養基,使細胞破裂,細胞間隙增加,減小細胞壁、細胞間質等傳質屏障對有效成分從胞內向提取介質擴散的傳質阻力,使有效成分提取率明顯升高[6]。酵母菌直接發酵上述藥材總生物堿增加顯著,可能是因為酵母菌直接以川烏和黑順片中的成分為營養源,發酵充分、完全,而以麵粉為基質進行酵母菌擴增,之後再與川烏、附子混合發酵後總生物堿含量較酵母菌直接總生物堿含量低,因為酵母菌常生長在含糖(或鹽)量較高的環境中,可優先利用麵粉中的糖類為營養[7],而對藥材的利用率降低,同時加入麵粉會影響生物堿的溶出,故導致其對川烏和黑順片的利用率相對較低,酵母菌+麵粉發酵組幹浸膏得率最高(39.5%),是否與加入的麵粉有關有待於進一步研究,由於除沉過程對有效成分有影響,因此本研究認為酵母菌直接發酵程序簡單、操作方麵、總生物堿較高,值得深入研究。
微生物發酵可使中藥材含量和成分發生變化,如酵母菌發酵大黃後,總蒽醌含量略有降低,結合型蒽醌含量降低,但遊離型蒽醌含量增加6倍左右[8]。川烏和黑順片中的生物堿-雙酯型二萜類生物堿,如烏頭堿、次烏頭堿、新烏頭堿,既是有效成分,也是毒性成分,雙酯型生物堿經轉化可分解成毒性較小的單酯類生物堿[9]。本研究酵母發酵川烏和黑順片總生物堿增加顯著,其中雙酯型生物堿與單酯型生物堿的含量變化規律有待於進一步研究,如何通過優化工藝達到減毒增效、提高總生物堿含量繼而開發外用止痛劑,將是本研究下一步要解決的問題。
作者:葛喜珍 劉潔 蘇建樹,鄭來麗,李利輝,趙有璽,田平芳《時珍國醫國藥》
【參考文獻】
[1] Ange‘lica M,Bello-Ram,reza, Alejandro A. Nava-Ocampo. A QSAR analysis of toxicity of Aconitum alkaloids[J].Fundamental & Clinical Pharmacology,2004,18:699.
[2] 楊 明,劉小彬,黃慶德.附子甘草配伍減毒增效機理探析[J]. 時珍國醫國藥,2003,14(4):197.
[3] 葛喜珍.微生物發酵在中藥研究中的應用[J].時珍國醫國藥,2008,19(2):386.
[4] 陳其華.中成藥中烏頭總堿的酸性染料比色測定法[J].中國中藥雜誌, 1991, 16(8): 476.
[5] 陳海濱,吳春敏,劉洪旭.片仔癀質量標準研究[J].海峽藥學,2006,18(1):24.
[6] 王興紅,李旗德,曹秋娥.微生物發酵中藥應成為中藥研究的新內容[J].中草藥,2001,32(3):267.
[7] 明儒成,聶海玲,封新平.一種新組分酵母菌培養基的研製及應用[J].生物技術,2008,18(2):49.
[8] 戴萬生,趙榮華.發酵法對大黃蒽醌類成分含量的影響[J].雲南中醫藥雜誌,2005,26(1):38.
[9] Thomas Y.K. Chan. Incidence of Herb-Induced Aconitine Poisoning in
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