1.實驗目的和要求
(1)通過對周圍環境中微生物的觀察,理解無菌操作原理,了解微生物的普遍存在性。
(2)通過從土壤中分離純化微生物,掌握無菌操作技術。
2.實驗材料和儀器
2.1配製肉湯蛋白腖固體培養基平板(每組15個)
(1)牛肉膏5g;
(2)蛋白腖10g;
(3)NaCl 5g;
(4)瓊脂20g;
(5)自來水1000mL pH 7.5,0.1MPa,121℃來菌20min。
2.2無菌生理鹽水
(1)250mL三角瓶中加入99mL 0.9% NaCl (加20個左右的玻璃珠);
(2)250mL三角瓶中加入50mL 0.9% NaCl (作10倍稀釋用)。
2.3儀器及器皿
(1)帶螺帽試管5支;
(2)牙簽2支;
(3)5mL及1mL吸頭2支;
(4)塗布棒2支;
(5)5mL及1mL取液器各一支;
(6)30℃和37℃培養箱;
(7)接種環、酒精燈和火柴;
(8)搖床。
(1)-(4)要求事先滅菌。
3.實驗方法和步驟
3.1從土壤中分離和純化微生物
(1)采土樣
選擇較肥沃的土壤,鏟去表土層,挖5-20cm深度的或特殊要求的地方土壤數10g,裝入滅過菌的牛皮紙袋內,封好袋口,做好編號記錄,攜回實驗室供分離用。
(2)製備土壤稀釋液
稱取土樣1.0g放入盛99mL無菌水並帶有玻璃珠的三角瓶中,置搖床振蕩5min使土樣均勻分散在稀釋液中成為土壤懸液(10-2)。用1mL的無菌吸頭從中吸取0.5mL土壤懸液注入盛有4.5mL無菌水的試管中,吹吸3次,振蕩混勻(10-3)。然後再用同一支1mL吸頭,從此管中吸取0.5mL注入另一盛有4.5mL無菌水的試管中(10-4),依此類推製成10-5,10-6,10-7各種稀釋度的土壤溶液。
3.2塗布
用一支1mL無菌吸頭分別從稀釋度10-7、10-6和10-5的土壤稀釋液中各吸取0.1mL對號放入已寫好稀釋度的肉湯蛋白腖培養基平板上,用無菌玻璃塗棒在培養基表麵輕輕地塗布均勻。塗布時從低濃度到高濃度分別在培養基表麵輕輕地塗布,可轉動皿底一定角度,繼續塗布,直至均勻。每個濃度做3個平板。
3.3培養
將平板倒置於37℃溫箱中培養48h。統計每個平板長出的平均菌落數。根據下麵菌落計數方法,算出每克土壤中的細菌含量。
3.4菌落計數方法
先計算相同稀釋度的平均菌落數。若其中一個培養皿有較大片菌苔生長時,則不應使用,而應以無片狀菌苔生長的平皿作為該稀釋度的平均菌落數。若片狀菌苔的大小不到培養皿的一半,而其餘的一半菌落分布又很均勻時,可將此一半的菌落數乘2以代表全部平皿的菌落數,然後再計算該稀釋度的平均菌落數。
首先選擇平均菌落數為30~300的平板,當隻有一個稀釋度的平均菌落數符合此範圍時,則以該平均菌落數乘以其稀釋倍數即為該樣品中的微生物總數。
若有兩個稀釋度的平均菌落數為30~300,則按兩者菌落總數之比值來決定。若其比值小於2,應采取兩者的平均數:
若大於2,則取其中較少的菌落總數。
若所有稀釋度的平均菌落數均大於300,則應按稀釋度最高的平均菌落數乘以稀釋倍數。
若所有稀釋度的平均菌落數均小於30,則應按稀釋度最低的平均菌落數乘以稀釋倍數。
若所有稀釋度的平均菌落數均不在30~300之間,則以最接近30或300的平均菌落數乘以稀釋倍數。
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