前 言
本標準代替GB4789.10—2010《食品安全國家標準 食品微生物學檢驗 金黃色葡萄球菌檢驗》、SN/T0172—2010《進出口食品中金黃色葡萄球菌檢驗方法》、SN/T2154—2008《進出口食品中凝固酶陽性葡萄球菌檢測方法 兔血漿纖維蛋白原瓊脂培養基技術》。
本標準與GB4789.10—2010相比,主要變化如下:
———試驗用增菌液統一為7.5%氯化鈉肉湯。
1 範圍
本標準規定了食品中金黃色葡萄球菌(Staphylococcusaureus)的檢驗方法。
本標準第一法適用於食品中金黃色葡萄球菌的定性檢驗;第二法適用於金黃色葡萄球菌含量較高的食品中金黃色葡萄球菌的計數;第三法適用於金黃色葡萄球菌含量較低的食品中金黃色葡萄球菌的計數。
2 設備和材料
除微生物實驗室常規滅菌及培養設備外,其他設備和材料如下:
2.1 恒溫培養箱:36℃±1℃。
2.2 冰箱:2℃~5℃。
2.3 恒溫水浴箱:36℃~56℃。
2.4 天平:感量0.1g。
2.5 均質器。
2.6 振蕩器。
2.7 無菌吸管:1mL(具0.01mL刻度)、10mL(具0.1mL刻度)或微量移液器及吸頭。
2.8 無菌錐形瓶:容量100mL、500mL。
2.9 無菌培養皿:直徑90mm。
2.10 塗布棒。
2.11 pH 計或pH 比色管或精密pH 試紙。
3 培養基和試劑
3.1 7.5%氯化鈉肉湯:見A.1。
3.2 血瓊脂平板:見A.2。
3.3 Baird-Parker瓊脂平板:見A.3。
3.4 腦心浸出液肉湯(BHI):見A.4。
3.5 兔血漿:見A.5。
3.6 稀釋液:磷酸鹽緩衝液:見A.6。
3.7 營養瓊脂小斜麵:見A.7。
3.8 革蘭氏染色液:見A.8。
3.9 無菌生理鹽水:見A.9。
第一法 金黃色葡萄球菌定性檢驗
4 檢驗程序
金黃色葡萄球菌定性檢驗程序見圖1。
5 操作步驟
5.1 樣品的處理
稱取25g樣品至盛有225mL7.5%氯化鈉肉湯的無菌均質杯內,8000r/min~10000r/min均質1min~2min,或放入盛有225mL7.5%氯化鈉肉湯無菌均質袋中,用拍擊式均質器拍打1 min~2min。若樣品為液態,吸取25mL樣品至盛有225mL7.5%氯化鈉肉湯的無菌錐形瓶(瓶內可預置適當數量的無菌玻璃珠)中,振蕩混勻。
5.2 增菌
將上述樣品勻液於36℃±1℃培養18h~24h。金黃色葡萄球菌在7.5%氯化鈉肉湯中呈混濁生長。
5.3 分離
將增菌後的培養物,分別劃線接種到Baird-Parker平板和血平板,血平板36 ℃±1 ℃培養18h~24h。Baird-Parker平板36℃±1℃培養24h~48h。
5.4 初步鑒定
金黃色葡萄球菌在Baird-Parker平板上呈圓形,表麵光滑、凸起、濕潤、菌落直徑為2mm~3mm,顏色呈灰黑色至黑色,有光澤,常有淺色(非白色)的邊緣,周圍繞以不透明圈(沉澱),其外常有一清晰帶。當用接種針觸及菌落時具有黃油樣黏稠感。有時可見到不分解脂肪的菌株,除沒有不透明圈和清晰帶外,其他外觀基本相同。從長期貯存的冷凍或脫水食品中分離的菌落,其黑色常較典型菌落淺些,且外觀可能較粗糙,質地較幹燥。在血平板上,形成菌落較大,圓形、光滑凸起、濕潤、金黃色(有時為白色),菌落周圍可見完全透明溶血圈。挑取上述可疑菌落進行革蘭氏染色鏡檢及血漿凝固酶試驗。
5.5 確證鑒定
5.5.1 染色鏡檢:金黃色葡萄球菌為革蘭氏陽性球菌,排列呈葡萄球狀,無芽胞,無莢膜,直徑約為0.5μm~1μm。
5.5.2 血漿凝固酶試驗:挑取Baird-Parker平板或血平板上至少5個可疑菌落(小於5個全選),分別接種到5mLBHI和營養瓊脂小斜麵,36℃±1℃培養18h~24h。取新鮮配製兔血漿0.5mL,放入小試管中,再加入BHI培養物0.2mL~0.3mL,振蕩搖勻,置36℃±1℃溫箱或水浴箱內,每半小時觀察一次,觀察6h,如呈現凝固(即將試管傾斜或倒置時,呈現凝塊)或凝固體積大於原體積的一半,被判定為陽性結果。同時以血漿凝固酶試驗陽性和陰性葡萄球菌菌株的肉湯培養物作為對照。也可用商品化的試劑,按說明書操作,進行血漿凝固酶試驗。結果如可疑,挑取營養瓊脂小斜麵的菌落到5mLBHI,36℃±1℃培養18h~48h,重複試驗。
5.6 葡萄球菌腸毒素的檢驗(選做)
可疑食物中毒樣品或產生葡萄球菌腸毒素的金黃色葡萄球菌菌株的鑒定,應按附錄B檢測葡萄球菌腸毒素。
6 結果與報告
6.1 結果判定:符合5.4、5.5,可判定為金黃色葡萄球菌。
6.2 結果報告:在25g(mL)樣品中檢出或未檢出金黃色葡萄球菌。
第二法 金黃色葡萄球菌平板計數法
7 檢驗程序
金黃色葡萄球菌平板計數法檢驗程序見圖2。
8 操作步驟
8.1 樣品的稀釋
8.1.1 固體和半固體樣品:稱取25g樣品置於盛有225mL磷酸鹽緩衝液或生理鹽水的無菌均質杯內,8000r/min~10000r/min均質1min~2min,或置於盛有225mL稀釋液的無菌均質袋中,用拍擊式均質器拍打1min~2min,製成1∶10的樣品勻液。
8.1.2 液體樣品:以無菌吸管吸取25mL樣品置於盛有225mL磷酸鹽緩衝液或生理鹽水的無菌錐形瓶(瓶內預置適當數量的無菌玻璃珠)中,充分混勻,製成1∶10的樣品勻液。
8.1.3 用1mL無菌吸管或微量移液器吸取1∶10樣品勻液1mL,沿管壁緩慢注於盛有9mL磷酸鹽緩衝液或生理鹽水的無菌試管中(注意吸管或吸頭尖端不要觸及稀釋液麵),振搖試管或換用1支1mL無菌吸管反複吹打使其混合均勻,製成1∶100的樣品勻液。
8.1.4 按8.1.3操作程序,製備10倍係列稀釋樣品勻液。每遞增稀釋一次,換用1次1mL無菌吸管或吸頭。
8.2 樣品的接種
根據對樣品汙染狀況的估計,選擇2個~3個適宜稀釋度的樣品勻液(液體樣品可包括原液),在進行10倍遞增稀釋的同時,每個稀釋度分別吸取1mL樣品勻液以0.3mL、0.3mL、0.4mL接種量分別加入三塊Baird-Parker平板,然後用無菌塗布棒塗布整個平板,注意不要觸及平板邊緣。使用前,如Baird-Parker平板表麵有水珠,可放在25℃~50℃的培養箱裏幹燥,直到平板表麵的水珠消失。
8.3 培養
在通常情況下,塗布後,將平板靜置10min,如樣液不易吸收,可將平板放在培養箱36℃±1 ℃培養1h;等樣品勻液吸收後翻轉平板,倒置後於36℃±1℃培養24h~48h。
8.4 典型菌落計數和確認
8.4.1 金黃色葡萄球菌在Baird-Parker平板上呈圓形,表麵光滑、凸起、濕潤、菌落直徑為2 mm~3mm,顏色呈灰黑色至黑色,有光澤,常有淺色(非白色)的邊緣,周圍繞以不透明圈(沉澱),其外常有一清晰帶。當用接種針觸及菌落時具有黃油樣黏稠感。有時可見到不分解脂肪的菌株,除沒有不透明圈和清晰帶外,其他外觀基本相同。從長期貯存的冷凍或脫水食品中分離的菌落,其黑色常較典型菌落淺些,且外觀可能較粗糙,質地較幹燥。
8.4.2 選擇有典型的金黃色葡萄球菌菌落的平板,且同一稀釋度3個平板所有菌落數合計在20CFU~200CFU之間的平板,計數典型菌落數。
8.4.3 從典型菌落中至少選5個可疑菌落(小於5個全選)進行鑒定試驗。分別做染色鏡檢,血漿凝固酶試驗(見5.5);同時劃線接種到血平板36℃±1℃培養18h~24h後觀察菌落形態,金黃色葡萄球菌菌落較大,圓形、光滑凸起、濕潤、金黃色(有時為白色),菌落周圍可見完全透明溶血圈。
9 結果計算
9.1 若隻有一個稀釋度平板的典型菌落數在20CFU~200CFU 之間,計數該稀釋度平板上的典型菌落,按式(1)計算。
9.2 若最低稀釋度平板的典型菌落數小於20CFU,計數該稀釋度平板上的典型菌落,按式(1)計算。
9.3 若某一稀釋度平板的典型菌落數大於200CFU,但下一稀釋度平板上沒有典型菌落,計數該稀釋度平板上的典型菌落,按式(1)計算。
9.4 若某一稀釋度平板的典型菌落數大於200CFU,而下一稀釋度平板上雖有典型菌落但不在20CFU~200CFU 範圍內,應計數該稀釋度平板上的典型菌落,按式(1)計算。
9.5 若2個連續稀釋度的平板典型菌落數均在20CFU~200CFU 之間,按式(2)計算。
9.6 計算公式
式(1):
T =AB/Cd …………………………(1)
式中:
T ———樣品中金黃色葡萄球菌菌落數;
A ———某一稀釋度典型菌落的總數;
B ———某一稀釋度鑒定為陽性的菌落數;
C ———某一稀釋度用於鑒定試驗的菌落數;
d ———稀釋因子。
式(2):
T =（A1B1/C1 +A2B2/C2）/1.1d ………………………(2)
式中:
T ———樣品中金黃色葡萄球菌菌落數;
A1 ———第一稀釋度(低稀釋倍數)典型菌落的總數;
B1 ———第一稀釋度(低稀釋倍數)鑒定為陽性的菌落數;
C1 ———第一稀釋度(低稀釋倍數)用於鑒定試驗的菌落數;
A2 ———第二稀釋度(高稀釋倍數)典型菌落的總數;
B2 ———第二稀釋度(高稀釋倍數)鑒定為陽性的菌落數;
C2 ———第二稀釋度(高稀釋倍數)用於鑒定試驗的菌落數;
1.1———計算係數;
d ———稀釋因子(第一稀釋度)。
10 報告
根據9中公式計算結果,報告每g(mL)樣品中金黃色葡萄球菌數,以CFU/g(mL)表示;如T 值為0,則以小於1乘以最低稀釋倍數報告。
第三法 金黃色葡萄球菌MPN 計數
11 檢驗程序
金黃色葡萄球菌MPN 計數檢驗程序見圖3。
12 操作步驟
12.1 樣品的稀釋
按8.1進行。
12.2 接種和培養
12.2.1 根據對樣品汙染狀況的估計,選擇3個適宜稀釋度的樣品勻液(液體樣品可包括原液),在進行10倍遞增稀釋的同時,每個稀釋度分別接種1 mL 樣品勻液至7.5%氯化鈉肉湯管(如接種量超過1mL,則用雙料7.5%氯化鈉肉湯),每個稀釋度接種3管,將上述接種物36℃±1℃培養,18h~24h。
12.2.2 用接種環從培養後的7.5%氯化鈉肉湯管中分別取培養物1環,移種於Baird-Parker平板36℃±1℃培養,24h~48h。
12.3 典型菌落確認
按8.4.1、8.4.3進行。
13 結果與報告
根據證實為金黃色葡萄球菌陽性的試管管數,查MPN 檢索表(見附錄C),報告每g(mL)樣品中金黃色葡萄球菌的最可能數,以MPN/g(mL)表示。
附 錄 A
培養基和試劑
A.1 7.5%氯化鈉肉湯
A.1.1 成分
蛋白腖 10.0g
牛肉膏 5.0g
氯化鈉 75g
蒸餾水 1000mL
A.1.2 製法
將上述成分加熱溶解,調節pH 至7.4±0.2,分裝,每瓶225mL,121℃高壓滅菌15min。
A.2 血瓊脂平板
A.2.1 成分
豆粉瓊脂(pH7.5±0.2) 100mL
脫纖維羊血(或兔血) 5mL~10mL
A.2.2 製法
加熱溶化瓊脂,冷卻至50℃,以無菌操作加入脫纖維羊血,搖勻,傾注平板。
A.3 Baird-Parker瓊脂平板
A.3.1 成分
胰蛋白腖 10.0g
牛肉膏 5.0g
酵母膏 1.0g
丙酮酸鈉 10.0g
甘氨酸 12.0g
氯化鋰(LiCl·6H2O) 5.0g
瓊脂 20.0g
蒸餾水 950mL
A.3.2 增菌劑的配法
30%卵黃鹽水50mL與通過0.22μm 孔徑濾膜進行過濾除菌的1%亞碲酸鉀溶液10mL混合,保存於冰箱內。
A.3.3 製法
將各成分加到蒸餾水中,加熱煮沸至完全溶解,調節pH 至7.0±0.2。分裝每瓶95mL,121℃高壓滅菌15min。臨用時加熱溶化瓊脂,冷至50 ℃,每95mL加入預熱至50 ℃的卵黃亞碲酸鉀增菌劑5mL 搖勻後傾注平板。培養基應是致密不透明的。使用前在冰箱儲存不得超過48h。
A.4 腦心浸出液肉湯(BHI)
A.4.1 成分
胰蛋白質腖 10.0g
氯化鈉 5.0g
磷酸氫二鈉(12H2O) 2.5g
葡萄糖 2.0g
牛心浸出液 500mL
A.4.2 製法
加熱溶解,調節pH 至7.4±0.2,分裝16mm×160mm 試管,每管5mL置121℃,15min滅菌。
A.5 兔血漿
取檸檬酸鈉3.8g,加蒸餾水100mL,溶解後過濾,裝瓶,121 ℃高壓滅菌15min。兔血漿製備:取3.8%檸檬酸鈉溶液一份,加兔全血4份,混好靜置(或以3000r/min離心30min),使血液細胞下降,即可得血漿。
A.6 磷酸鹽緩衝液
A.6.1 成分
磷酸二氫鉀(KH2PO4) 34.0g
蒸餾水 500mL
A.6.2 製法
貯存液:稱取34.0g的磷酸二氫鉀溶於500mL蒸餾水中,用大約175mL的1mol/L氫氧化鈉溶液調節pH 至7.2,用蒸餾水稀釋至1000mL後貯存於冰箱。
稀釋液:取貯存液1.25 mL,用蒸餾水稀釋至1000 mL,分裝於適宜容器中,121 ℃ 高壓滅菌15min。
A.7 營養瓊脂小斜麵
A.7.1 成分
蛋白腖 10.0g
牛肉膏 3.0g
氯化鈉 5.0g
瓊脂 15.0g~20.0g
蒸餾水 1000mL
A.7.2 製法
將除瓊脂以外的各成分溶解於蒸餾水內,加入15%氫氧化鈉溶液約2mL調節pH 至7.3±0.2。加入瓊脂,加熱煮沸,使瓊脂溶化,分裝13mm×130mm 試管,121℃高壓滅菌15min。
A.8 革蘭氏染色液
A.8.1 結晶紫染色液
A.8.1.1 成分
結晶紫 1.0g
95%乙醇 20.0mL
1%草酸銨水溶液 80.0mL
A.8.1.2 製法
將結晶紫完全溶解於乙醇中,然後與草酸銨溶液混合。
A.8.2 革蘭氏碘液
A.8.2.1 成分
碘 1.0g
碘化鉀 2.0g
蒸餾水 300mL
A.8.2.2 製法
將碘與碘化鉀先行混合,加入蒸餾水少許充分振搖,待完全溶解後,再加蒸餾水至300mL。
A.8.3 沙黃複染液
A.8.3.1 成分
沙黃 0.25g
95%乙醇 10.0mL
蒸餾水 90.0mL
A.8.3.2 製法
將沙黃溶解於乙醇中,然後用蒸餾水稀釋。
A.8.4 染色法
a) 塗片在火焰上固定,滴加結晶紫染液,染1min,水洗。
b) 滴加革蘭氏碘液,作用1min,水洗。
c) 滴加95%乙醇脫色約15s~30s,直至染色液被洗掉,不要過分脫色,水洗。
d) 滴加複染液,複染1min,水洗、待幹、鏡檢。
A.9 無菌生理鹽水
A.9.1 成分
氯化鈉 8.5g
蒸餾水 1000mL
A.9.2 製法
稱取8.5g氯化鈉溶於1000mL蒸餾水中,121℃高壓滅菌15min。
附 錄 B
葡萄球菌腸毒素檢驗
B.1 試劑和材料
除另有規定外,所用試劑均為分析純,試驗用水應符合GB/T6682對一級水的規定。
B.1.1 A、B、C、D、E型金黃色葡萄球菌腸毒素分型ELISA 檢測試劑盒。
B.1.2 pH 試紙,範圍在3.5~8.0,精度0.1。
B.1.3 0.25mol/L、pH8.0的Tris緩衝液:將121.1g的Tris溶解到800mL的去離子水中,待溫度冷至室溫後,加42mL濃HCL,調pH 至8.0。
B.1.4 pH 7.4 的磷酸鹽緩衝液:稱取NaH2PO4 · H2O0.55g(或NaH2PO4 ·2H2O0.62g)、Na2HPO4·2H2O2.85g(或Na2HPO4·12H2O5.73g)、NaCl8.7g溶於1000mL蒸餾水中,充分混勻即可。
B.1.5 庚烷。
B.1.6 10%次氯酸鈉溶液。
B.1.7 腸毒素產毒培養基
B.1.7.1 成分
蛋白腖 20.0g
胰消化酪蛋白 200mg(氨基酸)
氯化鈉 5.0g
磷酸氫二鉀 1.0g
磷酸二氫鉀 1.0g
氯化鈣 0.1g
硫酸鎂 0.2g
菸酸 0.01g
蒸餾水 1000mL
pH7.3±0.2
B.1.7.2 製法
將所有成分混於水中,溶解後調節pH,121℃高壓滅菌30min。
B.1.8 營養瓊脂
B.1.8.1 成分
蛋白腖 10.0g
牛肉膏 3.0g
氯化鈉 5.0g
瓊脂 15.0g~20.0g
蒸餾水 1000mL
B.1.8.2 製法
將除瓊脂以外的各成分溶解於蒸餾水內,加入15%氫氧化鈉溶液約2mL校正pH 至7.3±0.2。
加入瓊脂,加熱煮沸,使瓊脂溶化。分裝燒瓶,121℃高壓滅菌15min。
B.2 儀器和設備
B.2.1 電子天平:感量0.01g。
B.2.2 均質器。
B.2.3 離心機:轉速3000g~5000g。
B.2.4 離心管:50mL。
B.2.5 濾器:濾膜孔徑0.2μm。
B.2.6 微量加樣器:20μL~200μL、200μL~1000μL。
B.2.7 微量多通道加樣器:50μL~300μL。
B.2.8 自動洗板機(可選擇使用)。
B.2.9 酶標儀:波長450nm。
B.3 原理
本方法可用A、B、C、D、E型金黃色葡萄球菌腸毒素分型酶聯免疫吸附試劑盒完成。本方法測定的基礎是酶聯免疫吸附反應(ELISA)。96孔酶標板的每一個微孔條的A~E孔分別包被了A、B、C、D、E型葡萄球菌腸毒素抗體,H 孔為陽性質控,已包被混合型葡萄球菌腸毒素抗體,F和G 孔為陰性質控,包被了非免疫動物的抗體。樣品中如果有葡萄球菌腸毒素,遊離的葡萄球菌腸毒素則與各微孔中包被的特定抗體結合,形成抗原抗體複合物,其餘未結合的成分在洗板過程中被洗掉;抗原抗體複合物再與過氧化物酶標記物(二抗)結合,未結合上的酶標記物在洗板過程中被洗掉;加入酶底物和顯色劑並孵育,酶標記物上的酶催化底物分解,使無色的顯色劑變為藍色;加入反應終止液可使顏色由藍變黃,並終止了酶反應;以450nm 波長的酶標儀測量微孔溶液的吸光度值,樣品中的葡萄球菌腸毒素與吸光度值成正比。
B.4 檢測步驟
B.4.1 從分離菌株培養物中檢測葡萄球菌腸毒素方法
待測菌株接種營養瓊脂斜麵(試管18mm×180mm)36℃培養24h,用5mL生理鹽水洗下菌落,傾入60mL 產毒培養基中,36 ℃ 振蕩培養48h,振速為100 次/min,吸出菌液離心,8000r/min20min,加熱100℃,10min,取上清液,取100μL稀釋後的樣液進行試驗。
B.4.2 從食品中提取和檢測葡萄球菌毒素方法
B.4.2.1 牛奶和奶粉
將25g奶粉溶解到125mL、0.25M、pH8.0的Tris緩衝液中,混勻後同液體牛奶一樣按以下步驟製備。將牛奶於15℃,3500g 離心10min。將表麵形成的一層脂肪層移走,變成脫脂牛奶。用蒸餾水對其進行稀釋(1∶20)。取100μL稀釋後的樣液進行試驗。
B.4.2.2 脂肪含量不超過40%的食品
稱取10g樣品絞碎,加入pH7.4的PBS液15mL進行均質。振搖15min。於15℃,3500g 離心10min。必要時,移去上麵脂肪層。取上清液進行過濾除菌。取100μL的濾出液進行試驗。
B.4.2.3 脂肪含量超過40%的食品
稱取10g樣品絞碎,加入pH7.4的PBS液15mL進行均質。振搖15min。於15℃,3500g 離心10min。吸取5mL上層懸浮液,轉移到另外一個離心管中,再加入5mL的庚烷,充分混勻5min。於15℃,3500g 離心5min。將上部有機相(庚烷層)全部棄去,注意該過程中不要殘留庚烷。將下部水相層進行過濾除菌。取100μL的濾出液進行試驗。
B.4.2.4 其他食品可酌情參考上述食品處理方法。
B.4.3 檢測
B.4.3.1 所有操作均應在室溫(20 ℃~25 ℃)下進行,A、B、C、D、E 型金黃色葡萄球菌腸毒素分型ELISA 檢測試劑盒中所有試劑的溫度均應回升至室溫方可使用。測定中吸取不同的試劑和樣品溶液時應更換吸頭,用過的吸頭以及廢液處理前要浸泡到10%次氯酸鈉溶液中過夜。
B.4.3.2 將所需數量的微孔條插入框架中(一個樣品需要一個微孔條)。將樣品液加入微孔條的A~G孔,每孔100μL。H 孔加100μL的陽性對照,用手輕拍微孔板充分混勻,用黏膠紙封住微孔以防溶液揮發,置室溫下孵育1h。
B.4.3.3 將孔中液體傾倒至含10%次氯酸鈉溶液的容器中,並在吸水紙上拍打幾次以確保孔內不殘留液體。每孔用多通道加樣器注入250μL的洗液,再傾倒掉並在吸水紙上拍幹。重複以上洗板操作4次。本步驟也可由自動洗板機完成。
B.4.3.4 每孔加入100μL的酶標抗體,用手輕拍微孔板充分混勻,置室溫下孵育1h。
B.4.3.5 重複B.4.3.3的洗板程序。
B.4.3.6 加50μL 的TMB 底物和50μL 的發色劑至每個微孔中,輕拍混勻,室溫黑暗避光處孵育30min。
B.4.3.7 加入100μL的2mol/L硫酸終止液,輕拍混勻,30min內用酶標儀在450nm 波長條件下測量每個微孔溶液的OD值。
B.4.4 結果的計算和表述
B.4.4.1 質量控製
測試結果陽性質控的OD值要大於0.5,陰性質控的OD 值要小於0.3,如果不能同時滿足以上要求,測試的結果不被認可。對陽性結果要排除內源性過氧化物酶的幹擾。
B.4.4.2 臨界值的計算
每一個微孔條的F孔和G孔為陰性質控,兩個陰性質控OD值的平均值加上0.15為臨界值。
示例:陰性質控1=0.08
陰性質控2=0.10
平均值=0.09
臨界值=0.09+0.15=0.24
B.4.4.3 結果表述
OD值小於臨界值的樣品孔判為陰性,表述為樣品中未檢出某型金黃色葡萄球菌腸毒素;OD值大於或等於臨界值的樣品孔判為陽性,表述為樣品中檢出某型金黃色葡萄球菌腸毒素。
B.5 生物安全
因樣品中不排除有其他潛在的傳染性物質存在,所以要嚴格按照GB19489《實驗室 生物安全通用要求》對廢棄物進行處理。
附 錄 C
金黃色葡萄球菌最可能數(MPN)檢索表
每g(mL)檢樣中金黃色葡萄球菌最可能數(MPN)的檢索見表C.1。
