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流行性乙型腦炎病毒免疫



錄入時間:2009-7-8 13:37:09 來源:青島betway必威西汉姆联

流行性乙型腦炎病毒(三)
 7.免疫乙腦病毒產生堅強的持久免疫力,迄今沒有見到臨床病例在痊愈後第二 次感染發病 的報道。且如上述,乙腦病毒的抗原變異不顯著,尚未發現在免疫保護力方麵明顯不同 的型或亞型,這就為流行性乙型腦炎的特異性預防提供了良好的基礎。目前應用的乙腦 疫苗有滅活疫苗和弱毒疫苗兩種。滅活疫苗的製造方法簡單,易於保存,而且安全,但 因注射劑量較大,而且經常需要重複注射,國內目前應用的動物乙腦疫苗以弱毒疫苗為 主,但人用乙腦疫苗主要是滅活疫苗。 
 (1) 滅活疫苗:1943年,美國Sabin創製鼠腦滅活疫苗。 我國和日本也生產過大批 鼠腦滅活疫苗,並對人群進行大規模的免疫注射。由於疫苗中的鼠腦組織經常引起過敏 反應,日本於1966年研究成功酒精和魚精蛋白純化疫苗。美國於1966年創製倉鼠腎組織 培養滅活疫苗,免疫效果較好,而且適於大量生產,故已幾乎全部取代了鼠腦滅活疫苗。 隻在不具備組織培養條件的少數地區,繼續沿用鼠腦滅活疫苗作動物的預防注射。 
 ① 鼠腦滅活疫苗:采用免疫原性良好的強毒株,腦內通過8~12g小鼠, 使其最小 致死量提高至10-7/003ml(腦內)以上,作為種毒。製苗時,取種毒腦內接種小鼠 ,每隻003ml。逐日觀察,一般於接種後第3~4天出現症狀,挑選症狀明顯和瀕死的小鼠 ,斷頸或心髒放血後無菌采腦,置於內盛玻珠的厚壁玻瓶或於電動組織搗碎器內充分乳化 ,並補加pH78~80的磷酸鹽緩衝鹽水,作成10%懸液。再置2 000r/min的離心機內 離心沉澱20分鍾,吸取上層液,加入10%福爾馬林,使其最後濃度為02%。置4℃冰箱內, 每天充分振蕩一次,滅活21天。再用pH78~80的磷酸鹽緩衝鹽水稀釋1倍, 使鼠腦的 最後濃度為5%,福爾馬林的最後濃度為01%。作者所在的實驗室曾用這個方法製造乙腦 滅活疫苗,在用小鼠作效力測定時免疫指數(保護指數)高達20萬以上。這種疫苗用於 馬騾時,每次皮下注射5ml,間隔7~10天後再作第2次注射。 一般可使接種馬騾安全渡 過一個乙腦流行期。據幾個地區的應用結果來看,注射鼠腦滅活疫苗後可將發病率降低 至1/3~1/5。製造酒精魚精蛋白純化疫苗時,先將發病鼠腦作成20%懸液,以3 500r/min的速度 於4℃離心沉澱30分鍾,棄沉澱,吸取上層液,加入等量4℃的40%酒精,置10~15℃3小時 ,再以3  500r/min的速度離心沉澱30分鍾,棄上層液,取沉澱物,加入4℃ PBS, 作成40 %懸液,再以3 500r/min的速度於4℃離心沉澱30分鍾,棄沉澱,吸取上層液,加入等量 4℃ PBS,並按每ml 2~3mg的量加入硫酸魚精蛋白,置4℃感作30分鍾後,以3 500r/mi n的速度於4℃離心沉澱30分鍾,棄沉澱物,吸取上層液,加入福爾馬林和硫柳汞,使其 最後濃度為01%和001%。再作適當稀釋,並加入005%吐溫80即成。 
 ② 雞胚滅活疫苗:先使種毒通過雞胚幾代,待其完全適應於雞胚內增殖後應用。 將 雞胚適應毒作1∶100~1∶1 000稀釋後,接種於8日齡雞胚的卵黃囊內,於35~36℃溫箱中 繼續孵育64~68小時後收獲胚體,去頭及爪,加入pH78~80的磷酸鹽緩衝鹽水,於組 織搗碎器內作成20%懸液,以2 000r/min的速度於4℃滅活處理21天,經無菌、安全和效 力檢驗後應用。馬騾每次皮下注射10ml,間隔7~10天後再作第2次注射。由於雞胚苗的 免疫效果較差,用量大,保存期短,多次注射後曾見少數馬匹發生過敏反應,目前已少用.
③ 倉鼠腎組織培養滅活疫苗:接種強毒於倉鼠腎組織培養細胞內, 約於接毒後30~40 小時,在出現“++”的細胞病變時收獲,加入01%~02%福爾馬林作滅活處理,即為滅 活疫苗。為了提高疫苗產量,生物製品單位目前通用轉瓶培養法,即在10 000~15 000 ml的大轉瓶內,接常規方法培養倉鼠腎細胞,以內含5%犢牛血清的02%乳白蛋白水解物 作為營養液,轉瓶培養。待其長成單層後,以Earle液衝洗多次, 除去殘留的血清蛋 白,隨後換入內含007%半胱氨酸和01%人白蛋白的Earle液作維持液。維持液中含有 10-5濃度的強毒鼠腦。每瓶加入量為3 000ml。37℃培養28小時,鏡檢發現開始有細胞 病 變時即可收毒——吸取上層液。毒力效價一般可達10-6個小鼠MLD。加入005%福爾 馬林和0005%硫柳汞,置22℃滅活8天即成。在殘留有細胞的大轉瓶內,再行加入3 000ml 維持液,繼續培養17~20小時,有時還可獲得10-5~10-6效價的病毒液。  
(2) 弱毒疫苗:我國病毒學工作者在乙腦病毒的減毒和弱毒株的培育方麵,做了大量 工作,並已取得可喜成果。先後育成許多弱毒疫苗株,其中某些株已經做過大量人群或 動物的免疫試驗。美國和日本也曾育成幾個弱毒株,例如美國應用倉鼠腎組織培養細胞 進行繼代減毒,獲得OCT541株,再經雞胚細胞和雞腦細胞傳代,育成高度減毒株。 日 本也用倉鼠腎細胞傳代的方法獲得幾個弱毒株。
① 53株:係我國乙腦強毒SA14株經馴化篩選後獲得的弱毒疫苗株。SA14株 在連續通 過倉鼠腎原代細胞20代後,毒力發生顯著變化,其對小鼠的腦內毒力已由10-5~10 -6下降至10-1~1025/003ml。經蝕斑純化後育成1217號蝕斑株,繼續 傳代減 毒、 純 化,又選出1株蝕斑毒,即97株,再經傳代篩選,育成53株。用此株給3周齡小鼠作皮 下注射,病毒不能入腦,但對25周齡以下的小鼠,還有一定的入腦能力。 皮下或腦 內注射1~3日齡乳鼠,均有致病力。腦內及皮下注射時的致死毒力(LD50)分別為3 0 對數以下和20對數以下。曾經試用於40多萬兒童的接種試驗,證明安全, 並有較好的免 疫效果,人群保護率達80~90%,抗體陽轉率為85~91%。將53株或97株試用於馬匹和 豬的免疫接種,也獲較好效果。目前通用的是其倉鼠腎組織培養弱毒疫苗。  由於53株和97株在小鼠腦內連續傳3~5代後,殘餘毒力並不明顯回升。某些地 區試用此株接種(腦內)乳鼠,待其發病後,采腦作成10%懸液, 直接供馬騾或豬的 現場應用,收到較好效果。
  ② 28株:係將上述1217株經紫外線進一步減毒,再經乳鼠皮下傳代,提高其皮 下增殖力和免疫原性而育成的弱毒疫苗株。此株在給乳鼠作腦內注射時,死亡率為75%,  皮下注射時引起50%的死亡率。3周齡小鼠在腦內注射時基本上不死亡,皮下注射後病 毒不能入腦。經乳鼠腦內連續傳代,毒力回升不明顯。給小鼠作一次皮下免疫注射, 保護力可達70對數以上。大規模的馬群免疫試驗(13萬餘匹)證明安全。免疫後1個月, 中和抗體的陽轉率達85%左右。流行病學調查證明,疫苗注射組的發病率為23/10萬,而 未注射對照組的發病率為1721/10萬,保護率為867%。目前通用倉鼠腎細胞培養疫苗。 試用28株接種小鼠,待其發病後采腦製苗,注射馬騾和豬,也取得良好的免疫效果。  曾用鼠腦和倉鼠腎培養的28株給4萬多匹馬進行免疫注射, 僅極少數發生輕度局部 腫脹、低燒和食欲減退,未見其它不良反應。  敖堅等應用另一弱毒蝕斑株——142株在BHK21細胞上製造弱毒疫苗。用 以給妊娠母豬進行免疫注射,未見不良反應。接種後的中和抗體陽轉率為80%~100%,死 產率顯著下降。  在上述弱毒疫苗株的基礎上,又曾育成一些新的弱毒株,例如將53株通過雞胚、  倉鼠腎細胞交替傳代3次, 再在雞胚細胞上挑斑( 蝕斑), 育成所謂的雞53株等等。  由於液體活疫苗在4℃的有效期僅2~3個月, 而凍幹保存時又易在幹燥過程中使疫苗效價下 降,因此必須積極研究弱毒疫苗的保存方法,以利推廣應用。  幼畜可由初乳獲得被動免疫——母源抗體。具有被動免疫的幼畜,在用弱毒疫苗接種 後不易產生主動免疫。為保證有效免疫力的產生,活疫苗接種應在幼駒出生後2~4個月進 行,幼豬也應在出生後2個月以上開始接種。  日本曾用井上等育成的減毒M株於豬的預防接種。
  (3) 基因工程疫苗:  Konishi等在1994年以禽痘病毒作為載體分別表達了JEV的preM、E和NS1基因以及 pre M和E基因;重組病毒免疫小鼠,能抵抗致死劑量JEV的攻擊。 Konishi等於1992年在一 個高度致弱的痘苗病毒株NYVAC表達了JEV的preM、E和NS1基因, 以108PFU的重組病毒 免疫豬,7天後血清中出現JEV中和抗體及血凝抑製抗體,28天後注射第二個劑量的重組病毒 , 血清中和抗體效價增高。在用2×105PFU JEV攻擊後, 已接種重組病毒的豬血清中JEV水 平顯著降低。活載體疫苗與常規疫苗相比,有著一定的優勢,有望代替常規疫苗的應用。

 

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