一、簡要說明
GB 5009.89—2023於2023.9.6發布,於2024年3月6日實施。新標準與GB 5009.89—2016相比,主要變化如下:
高效液相色譜法調整為第一法,微生物法調整為第二法;
增加了第二法 微生物法中的微孔板法、試樣處理後調節pH的要求;
修改了第二法 微生物法的標準曲線濃度範圍、精密度和定量限。
二、對比詳情
新舊版標準變更的內容詳細列舉如表2。
表2 新舊標準變更內容詳細對比表格
變更條目 |
變更內容 |
詳情解釋 |
1範圍 |
第一法(色譜)適用於
第二法(微生物)適用於 |
針對使用範圍進行了變更。 |
2原理 |
第一法液相色譜法原理描述變更
樣品經酶解、沉澱蛋白質等前處理後 |
紫外波長的數值實際操作中仍使用261nm。 |
3.1試劑 |
3.1.1鹽酸(HCl):優級純。 3.1.2氫氧化鈉(NaOH):優級純。 3.1.3甲醇(CH3OH):色譜純 3.1.4異丙醇(C3H8O):色譜純。 3.1.5庚皖磺酸鈉(C7H15NaO3S):色譜純。 3.1.6澱粉酶:酶活力≥1.5 µ/mg。
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舊版使用高氯酸配置流動相,新版更改為鹽酸。 |
3.2試劑配製 |
3.2試劑配製 3.2.1鹽酸溶液(5.0mol/L):量取415mL鹽酸,加水定容至1000mL。 3.2.2鹽酸溶液(0.lmol/L):吸取8.3mL鹽酸,加水定容至1000mL。 3.2.3氫氧化鈉溶液(5.0mol/L):稱取200g氫氧化鈉,加水定容至1000mL。 3.2.4氫氧化鈉溶液(0.1mol/L):吸取20mL氫氧化鈉溶液(5.0mol/L),加水定容至1000mL。
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5.2液相色譜參考條件 |
液相色譜參考條件如下: a)液相色譜柱:C18(粒徑5µm,250mm×4.6mm)或等效柱。 b)流動相:甲醇70mL、異丙醇20mL、庚皖磺酸鈉1g,用910mL水溶解並混勻後,用鹽酸凋節pH至2.1±0.1。 c)柱溫:25℃±0.5℃。 d)流速:1.0mL/min。 e)進樣量:20µL。 f)紫外檢測波長:261nm。 |
舊版使用高氯酸配置流動相,新版更改為鹽酸。 |
3.3標準品 3.4標準溶液配製 |
3.3.1煙酸(C6H5NO2,CAS號:59-67-6):純度≥98%,或經國家認證並授予標準物質證書的標準品。 3.3.2煙酰胺(C6H6N2O,CAS號:98-92-0):純度≥98%,或經國家認證並授予標準物質證書的標準品。 3.4.1煙酸和煙酰胺標準儲備溶液(1.000mg/mL):將煙酸(或煙酰胺)標準品置入含五氧化二磷的幹燥器中,幹燥過夜。準確稱取各0.1 g(精確到1mg),用0.1mol/L鹽酸溶解,定容至100mL。2℃~8℃冷藏可保存1個月。
3.4.2煙酸和煙酰胺標準混合中間液(100.0µg/mL):準確吸取煙酸和煙酰胺標準儲備液各10.0mL於100mL容量瓶中,加水定容至刻度,混勻。2℃~8℃冷藏可保存1個月。 3.4.3煙酸和煙酰胺標準混合工作液:分別準確吸取標準混合中間液1.0mL、2.0mL、5.0mL、10.0mL、20.0mL於100 mL容量脰中,加水定容至刻度,混勻,得到質量濃度分別為1.0µg/mL、2.0µg/mL、5.0µg/mL、10.0µg/mL、20.0µg/mL的標準混合工作液。臨用現配。 |
標準品的純度原99%,舊版無幹燥器,冷藏溫度4℃,新增冷藏保存時間。中間液舊版無保存條件,校正標準儲備液刪除。 |
4儀器和設備 |
4.1高效液相色譜儀:配紫外檢測器或二極管陣列檢測器。 4.2天平:感量分別為0.1mg和0.01g。 4.3恒溫培養箱:30℃~80℃。 4.4超聲設備。 4.5 pH計:精度為0.1。 4.6粉碎機。
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5分析步驟 5.1樣品前處理 |
5.1.1試樣製備 樣品預處理:取有代表性的樣品至少200g,塊狀或顆粒狀樣品用粉碎機粉碎,粉末狀、糊狀或液體樣品充分混勻,置於密閉的容器內。 5.1.2澱粉類和含澱粉的食品 5.1.2.1稱取混合均勻固體試樣約5.0g(精確到0.01g),置於150mL錐形瓶中,加入約25mL 45℃~50℃的水,加入約0.5g澱粉酶,搖勻後向錐形瓶中充氮,蓋上塞,置於50℃~60℃的培養箱內酶解約30min,取出冷卻至室溫。 5.1.2.2稱取混合均勻液體試樣約20.0g(精確到0.01g),置於150mL錐形瓶中,加入約0.5g澱粉酶,搖勻後向錐形瓶中充氮,蓋上塞,置於50℃~60℃的培養箱內酶解約30min,取出冷卻至室溫。 5.1.3不含澱粉的食品 5.1.3.1稱取混合均勻固體試樣約5.0g(精確到0.01g),置於150mL錐形瓶中,加入約25mL 45℃~50℃的水,置於超聲設備中振蕩約10min以上充分溶解,靜置5min~10min,冷卻至室溫。 5.1.3.2稱取混合均勻液體試樣約20.0g(精確到0.01g),置於150mL錐形瓶中,置於超聲設備中振蕩約10min以上,充分溶解,靜置5min~10min,冷卻至室溫。 |
樣品預處理標明樣品200g,並且將固體液體試樣的步驟分開,實際方式步驟上無變更。 |
5.1.4試樣提取 |
注1:必要時,試樣測定液用水進行適當的稀釋(f),使試樣測定液中煙酸和煙酰胺質量濃度在1µg/mL~20µg/mL範圍內。 注2:推薦充氮條件:壓力0.055MPa~0.062MPa氮氣充氮30s。 |
增加充氮條件。 |
6.1試樣煙酸或煙酰胺含量計算 |
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新增加的f為5.1.4中注1的稀釋倍數。 |
6.2試樣煙酸和煙酰胺總含量計算 |
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維生素PP更改為煙酸煙酰胺,同種物質。 計算結果有效位數變更。 |
8.其他 |
固體樣品:當稱樣量為5g時,煙酸檢出限為30µg/l00g,定量限為l00µg/100g,煙酰胺檢出限為40µg/l00g,定量限為120µg/l00g。 液體樣品:當稱樣量為20g時,煙酸檢出限為7.5µg/100g,定量限為25µg/100g,煙酰胺檢出限為10µg/100g,定量限為30µg/100g。
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增加了樣品不同的檢出限,對應5.1步驟固體液體不同樣品處理。 |
9原理 |
煙酸和煙酰胺是植物乳植杆菌(LactiPLantibaciLLusPLantarum)生長所必需的營養素,在煙酸測定培養基中,植物乳植杆菌的生長與煙酸(或煙酰胺)的含量呈相關性,根據煙酸(或煙酰胺)含量與透光率(或吸光度)的標準曲線計算出試樣中煙酸(或煙酰胺)含量。 |
菌名進行變更。 |
10試劑和材料 |
除非另有規定,本方法所用試劑均為分析純,水為GB/T6682規定的一級水或二級水。 |
增加可用一級水。 |
10.1菌株 |
植物乳植杆菌(LactipLantibaciLLuspLantarum)(原植物乳杆菌,LactobaciLLuspLantarum)ATCC8014或等效菌株。 |
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10.3試劑 |
10.3.1無水乙醇(C2H5OH)。
10.3.2硫酸(H2SO4)95%~98%。 10.3.3氫氧化鈉(NaOH)。 10.3.4氯化鈉(NaCl)。 |
標定了硫酸純度要求。 |
10.5標準品 |
10.5.1煙酸(C6H5NO2,CAS號:59-67-6):純度≥98%,或經國家認證並授予標準物質證書的標準品。 10.5.2煙酰胺(C6H6N2O,CAS號:98-92-0):純度≥98%,或經國家認證並授予標準物質證書的標準品。
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純度要求更改。 |
10.6標準溶液配製 |
10.6.1煙酸(或煙酰胺)標準儲備液(50µg/mL):將煙酸(或煙酰胺)標準品置於含五氧化二磷的幹燥器中,幹燥過夜。按純度稱取,使煙酸(或煙酰胺)含量為50.0mg(精確至0.00lg),用乙醇溶液(25%) 溶解移入l000mL容量瓶,定容至刻度。 原為稱取50.0mg煙酸標準品,用乙醇溶液溶解至500mL容量瓶中,定容,新版使用1000mL的容量瓶。且沒有幹燥過夜的操作。 10.6.2煙酸(或煙酰胺)標準中間液(500ng/mL):吸取1.0mL煙酸(或煙酰胺)標準儲備液(50µg/mL)至100mL容量瓶,用乙醇溶液(25%)定容至刻度。 原為吸取1.0mL煙酸標準儲備液置於100mL棕色容量瓶中,用乙醇稀釋定容。 10.6.3煙酸(或煙酰胺)標準工作液:分兩個質量濃度,高質量濃度溶液的質量濃度為10ng/mL,低質量濃度溶液的質量濃度為5ng/mL。從中間液中(500ng/mL)吸取2次,各2mL,分別移入l00mL和200mL容量瓶,用水定容至刻度。 注:配製標準溶液使用棕色容量瓶,配製後的標準溶液要用棕色試劑瓶2℃~8℃冷藏於冰箱內。標準儲備液和中間液保存期6個月,標準使用液臨用現配。 |
稱量和容器變更,新版新增標準溶液儲存時間和條件要求。 |
11儀器和設備 |
11.1分析天平:感量為0.1mg和 11.2離心機。 11.3渦旋混合器。 11.4pH計:精度為0.01 11.5恒溫培養箱:36℃±1℃。 11.6分光光度計:540nm~60nm。 11.7酶標儀:540nm~660nm。 11.8冰箱:2℃~8℃。 11.9無菌微孔板。 11.10定量濾紙:直徑90mm。 11.11試管:18mm*180mm。 11.12容量瓶:容量100mL、200mL、250mL、500mL。 11.13單刻度移液管:1mL、5mL、10mL。 11.14刻度吸管:5mL(具0.1mL刻度)。 11.15玻璃漏鬥:直徑100mm。 11.16錐形瓶:容量250mL。 11.17燒杯:容量100mL。 11.18分液器:0mL~10mL。 11.19微量移液器:1000µL,200µL。 11.20無菌離心管:1.5mL。 11.21針頭過濾器:孔徑0.22µm。 注:清洗後的玻璃器皿和金屬器具在250℃下幹熱1h~2h。 |
刪除:均質設備、壓力蒸汽消毒器、超淨工作台、超聲波振蕩器。 |
12分析步驟 |
12.1測試菌懸液製備 12.1.1將植物乳植杆菌菌株活化後,用接種針穿刺接種到乳酸杆菌瓊脂培養基上,36℃±1℃培養16h~24h,再轉種2代~3代以增強活力。以斜麵培養物方式置冰箱冷藏,可保存1個月。 12.1.2將24h內活化後的菌株轉種至已滅菌的乳酸杆菌肉湯中,36℃±1℃培養16h~4h。以3000r/min~5000r/min離心5 min,棄去上清液,加入10mL生理鹽水,用渦旋混合器振蕩該懸液,再離心約5min,棄去上清液。如前操作清洗2次~3次後,再加10mL生理鹽水,振蕩混勻。吸取適量該菌懸液於10mL生理鹽水中,混勻製成測試菌懸液。 12.1.3以生理鹽水做空白,用分光光度計於550nm波長下測定測試菌懸液透光率(%T),調整上述菌液加入量,使測試菌懸液透光率在60%T~80%T。 |
原為取出後放入2℃~4℃冰箱中保存。每月至少傳種一次,作為儲備菌株保存。 新規定離心機的轉速。 原使用721分光光度計。 |
12.2試樣提取 |
塊狀、顆粒狀試樣需粉碎;乳粉、米粉等粉狀試樣需混勻;果蔬、肉、蛋、魚、動物內髒等需製成食糜;半固體食品等試樣需勻漿混勻;液體試樣用前振搖混合。 12.2.1固態試樣:準確稱取(精確至0.001g)試樣於錐形瓶中,其中新鮮果蔬試樣2g~5g;穀類、豆類、堅果類、內髒、生肉、幹製試樣0.2g~1g;乳粉、米粉等試樣2g~3g;一般營養素補充劑、複合營養強化劑0.1g~0.5g;其他食品0.2g~1g。 12.2.2液體飲料或流質、半流質試樣:稱取5g~10g(精確至0.001g)(或用單刻度移液管吸取適量體積)於錐形瓶中。特殊用途飲料稱取樣品後不需按12.2.3進行處理,稱樣後直接定容至100mL(V)後,按12.2.4進行稀釋。 如果試樣煙酸(或煙酰胺)含量過低,可適當提高稱樣量。 12.2.3加入試樣質量(以克計)10倍的硫酸溶液B(以毫升計),將上述混合物放入壓力蒸汽滅菌器,121℃下水解30min,取出迅速水浴冷卻至室溫。用氫氧化鈉溶液A和氫氧化鈉溶液B調節pH至4.5±0.2,移入250mL(V1)容量瓶中,用水定容至刻度。 用定量濾紙過濾,最初約10mL濾液應棄去,吸取5mL(V2)濾液於100mL燒杯中,加水約20mL,用氫氧化鈉溶液B調節pH至6.8±0.2,移入100mL(V)容量瓶中加水定容至刻度。 12.2.4稀釋:根據試樣中煙酸(或煙酰胺)含量用水對提取液進行適當稀釋,使稀釋後試樣提取液中煙或煙酰胺)質量濃度為5ng/mL~12ng/mL。 |
固態和液體試樣重新劃分稱樣方式。 原來用0.1mol/L氫氧化鈉溶液調pH至6.0~6.5,再用0.1mol/L鹽酸調pH至4.5±0.1,現在是用不同濃度的氫氧化鈉AB調到4.5±0.2。 |
12.3.1試管培養法 12.3.1.1標準曲線係列管 |
按表l順序加入水、標準曲線工作液和煙酸測定用培養基至培養試管中,表l中每一編號需製作3管。未接種空白試管(UN)、接種空白試管(IN)、標準係列管S1~S8中煙酸(或煙酰胺)質量濃度分別為0ng、0ng、5ng/mL、l0ng/mL、l5ng/mL、20ng/mL、25ng/mL、30ng/mL、40ng/mL、50ng/mL。
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標準曲線的濃度範圍變小,提高測量精密度。 |
12.3.1.3滅菌 |
將標準曲線係列管和試樣係列管放入壓力蒸汽滅菌器,121℃下滅菌5min(商品培養基按標簽說明進行滅菌),取出後迅速用水浴冷卻到室溫。為了保證加熱和冷卻過程中溫度均勻,滅菌試管不應距離滅菌器內壁過近,試管擺放不應過密,以免影響空氣流通。 |
新版增加冷卻到室溫,強調了空氣流通。 |
12.3.1.4接種 |
在無菌條件下,向上述每管中(標準曲線未接種空白管UN除外)各加入l滴(50µL~100µL)測試菌液,加蓋,充分振蕩混勻所有培養管。 |
明確滴加一滴的範圍。 |
12.3.1.5培養 |
將試管放入恒溫培養箱內,36℃土1℃下培養18h~24h。 |
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12.3.1.6測定 |
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新增空白對照要目視澄清。 進行兩次空白測試。 新標準裏試樣超過標準曲線S1-S8範圍的要舍去。 結果篩選要求更改。 |
12.3.2微孔板培養法 |
新增條目方法 |
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12.3.2.1標準曲線係列離心管 |
將煙酸標準曲線工作液在無菌條件下過濾除菌至無菌離心管中,按表3製備3套標準曲線係列離心管。未接種空白孔(UN)、接種空白孔(IN)、S1~S8中煙酸(或煙酰胺)質量濃度與試管法相同。
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新方法的標準曲線跟試管法的配製方法類似,區別於工作液增加量不同。 |
12.3.2.2試樣係列離心管 |
將稀釋後的試樣提取液(12.2.4)無菌條件下過濾除菌,按表4製備3套試樣係列離心管。
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12.3.2.3接種和培養 |
煙酸測定培養基滅菌冷卻後(或者尤菌條件下過濾除菌),每10 mL培養基中加入測試菌懸液(12.1.3)100µL~200µL,混勻,吸取150µL加入微孔板中。UN(未接種空白)使用未加入菌懸液的培養基。從標準曲線係列離心管和試樣係列離心管吸取150µL加入微孔板中,覆膜,置於恒溫培養箱中,36℃±1℃下培養18h~24h。 |
需留出空白對照UN。 |
12.3.2.4測定 |
培養結束後,對每個孔進行目測檢查,未接種空白孔(UN)內培養液應是澄清的,否則測定無效。標準曲線孔和試樣孔中培養液的吸光度應有梯度差別。將微孔板置於酶標儀內,540nm~550nm(或者610nm~630nm)選擇穩定波長進行比色。 記錄比色後的吸光度,數據處理同試管培養法12.3.1.6.2和12.3.1.6.3。計算全部編號試樣孔的總平均值為p,按式(3)根據稀釋倍數和稱樣量計算出試樣中煙酸(或煙酰胺)的含量。 注:也可使用與本標準檢測原理相同且經等效驗證的煙酸和煙酰胺檢測試劑盒。 |
數據處理與試管法相同。 |
13分析結果的表述 |
試樣中煙酸(或煙酰胺)含量按式(3)計算。
計算結果保留3位有效數字 注1:對於特殊用途飲料等不經處理直接定容的樣品,式中去除Vl和V2。 注2:如果用煙酸標準品配製標準溶液,測定結果則以煙酸計;如果用煙酰胺標準品配製標準溶液,測定結果以煙酰胺計。 注3:煙酰胺的結果乘以換算係數1.008,可以轉化為煙酸的結果。 注4:如果樣品中煙酸(或煙酰胺)含量較高,可適當進一步稀釋;如果含量較低,可適當提高樣品稱樣量或降低稀釋倍數。 |
新增結果有效數字要求,煙酸煙酰胺換算係數。 |
14精密度 |
在重複性條件下獲得的兩次獨立測定結果的絕對差值不得超過算術平均值的15%。
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精密度合並 |
15其他 |
15.1需要提取的樣品:當稱樣量為2g本標準定量限為1250µg/100g。 15.2特殊用途飲料等不經12.2.3步驟處理直接定容的樣品:當稱樣量為10g時定量限為5µg/100g。 |
重新更改定量限,並新增特殊用途飲料的定量限。 |
新舊版標準培養基變更的內容詳細列舉見表3。
表3 新舊版標準培養基變更內容詳細對比表格
培養基 |
版本 |
成分變更 |
配製方法變更 |
HB8636 乳酸杆菌瓊脂培養基 |
新版 |
腖化乳15.0g 酵母浸膏5.0g 葡萄糖10.0g 番茄汁100mL 磷酸二氫鉀2.0g 聚山梨糖單油酸酣1.0g 瓊脂10.0g 蒸溜水1000mL |
番茄汁的製備:將新鮮的西紅柿洗淨後稱重切碎,加等量的蒸溜水在100℃水浴中加熱,攪拌90min,然後用紗布過濾,校正pH為7.0±0.1,將浸出液分裝後,121℃下高壓滅菌15min。
將各成分加入蒸溜水中,加熱溶解,攪拌的同時保持煮沸狀態2min~3min,凋節pH至6.8±0.2(20℃~25℃),混合均勻後分裝試管,每管10mL。121℃下高壓滅菌15min。 |
舊版 |
光解腖15g 葡萄糖10g 磷酸氫二鉀2g 聚山梨糖單油酸酯1g 番茄汁100mL 瓊脂10g 蒸餾水1000mL |
先將除瓊脂以外的其他成分溶解於蒸餾水中,調節pH6.8±0.2(20℃~25℃),再加入瓊脂,加熱煮沸,使瓊脂融化。 混合均勻後分裝試管,每管10mL。121℃高壓滅菌15min,備用。 |
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HB8637 乳酸杆菌肉湯培養基
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新版 |
腖化乳15.0g 酵母浸膏5.0g 葡萄糖10.0g 番茄汁100mL 磷酸二氫鉀2.0g 聚山梨糖單油酸酯1.0g 蒸溜水1000mL |
將各成分加入蒸溜水中,加熱溶解,攪拌的同時保持煮沸狀態2min~3min,凋節pH至6.8±0.2(20℃~25℃),混合均勻後分裝試管,每管10mL。121℃下高壓滅菌15min。 |
舊版 |
光解腖15g 葡萄糖10g 磷酸氫二鉀2g 聚山梨糖單油酸酯1g 番茄汁100mL 蒸餾水1000mL |
將上述成分溶解於水中,調節pH6.8±0.2(20℃~25℃), 分裝10mL於試管中,121℃高壓滅菌15min,備用。 |
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HB7019-2 煙酸(或煙酰胺)測定用培養基
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新版 |
去維生素水解酪蛋白12.0g
葡萄糖40.0g 乙酸鈉20.0g L-胱氨酸0.4g DL-色氨酸0.2g 鹽酸腺膘呤20.0mg 鹽酸鳥膘呤20.0mg 尿嘧啶20.0mg 鹽酸硫胺素200.0µg 泛酸鈣200.0µg 鹽酸吡哆醇400.0µg 核黃素400.0µg 對氨基苯甲酸200.0µg
生物素0.8µg 磷酸氫二鉀1.0g 磷酸二氫鉀1.0g 硫酸鎂0.4g 氯化鈉20.0mg 硫酸亞鐵20.0mg 硫酸猛20.0mg 蒸溜水1000mL |
將上述成分溶解於水中,加熱溶解,攪拌的同時保持煮沸狀態2 min~3 min,凋節pH至6.8±0.2(20℃~25℃),備用。 |
舊版 |
將上述成分溶解於水中,調pH至6.7±0.2(20℃~25℃),備用。 |
三、對比解讀
(1)標準適用範圍:對色譜法中原強化食品的範圍進行變更,重新規定為“適用於調製乳粉、特殊膳食用食品和特殊用途飲料”,將微生物法的適用範圍擴大為食品中煙酸(煙酰胺)的測定。
(2)將原理中樣品前處理的描述更改為“酶解、沉澱蛋白腖”。
(3)色譜法中流動相的配製方法進行更改,不再使用高氯酸進行pH調整,新版本中變更為鹽酸(GR)。
(4)標準品純度色譜法中由不低於99%變更為不低於98%,微生物法中由不低於99.5%變更為不低於98%。
(5)煙酸和煙酰胺標準儲備溶液刪除濃度校準,新增放入含有五氧化二氮的幹燥器中幹燥過夜,且新增可冷藏2℃~8℃保存1月。新版標準中冷藏條件均由4℃保存變更為2℃~8℃。
(6)色譜儀的要求增加二極管陣列檢測器,樣品處理中預處理對樣品稱樣要求至少200g。新版將固體、液體試樣的樣品處理步驟分離,對應檢出限和定量限的不同要求。
(7)新版將維生素PP更改為煙酸和煙酰胺,並在計算公式中增加稀釋倍數,對應試樣提取中測定液的稀釋,目的為保證測定液的質量濃度在一定範圍內。計算結果的有效位數為3位有效數字。
(8)微生物法中對菌種名稱做出變更,由植物乳杆菌變更為植物乳植杆菌,試劑中刪除了鹽酸,把濃硫酸改為95%~98%的硫酸。試劑配製方法沒有改動。標準溶液濃度變更,新版標準中允許標準儲備溶液和中間液冷藏2℃~8℃保存6個月,原版標準中為2℃~4℃冷藏且未規定存儲時長。
(9)新版標準中測試菌可在轉種後以斜麵冷藏保存1個月,測試菌懸液製備中規定離心機轉速3000r/min~5000r/min。微生物法中試樣提取與色譜法相同均將固體試樣與液體試樣的步驟分離。通過定量濾紙過濾後的最初10mL濾液需去除。
(10)微生物法中標準曲線濃度範圍變小,由0ng/mL~500ng/mL變更為0ng/mL~50ng/mL,此變更與配製標準溶液時濃度變小相對應。新標準在滅菌與接種培養步驟中增加冷卻到室溫,強調空氣流通,以及規定滴加一滴測試液的體積範圍,變更培養時間不再進行額外延長培養。
(11)新增空白對照要目視澄清,使用未接種空白試管和接種空白試管進行兩次調節透光率。新標準裏試樣超過標準曲線S1~S8範圍的要舍去。結果篩選的要求更改。
(12)新版新增微生物法中的微孔板法,新方法的標準曲線跟試管法的配製方法類似,區別於工作液增加量不同,數據處理與試管法相同。新增結果有效數字要求,煙酸煙酰胺換算係數。各類食品的精密度要求合並,新版要求在重複性條件下獲得的兩次獨立測定結果的絕對差值不得超過算術平均值的15%。新版重新更改定量限,並新增特殊用途飲料的定量限。
四、涉及產品
新版本中主要對培養基原料成分和配製方式進行變動,原料中光解腖變更為腖化乳、新增酵母浸膏等,配製方式中新增煮沸時間的要求以及番茄汁的製備方法。詳細信息前文以提及。涉及的培養基產品信息見表1。
表1 新舊標準中涉及的培養基及編號
序號 |
新標準(2023版) |
舊標準(2016版) |
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名稱 |
貨號 |
名稱 |
貨號 |
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1 |
乳酸杆菌瓊脂培養基 |
HB8636 |
一致 |
一致 |
2 |
乳酸杆菌肉湯培養基 |
HB8637 |
一致 |
一致 |
3 |
煙酸(或煙酰胺)測定用培養基 |
HB7019-2 |
煙酸測定用培養基 |
HB7019-1 |
相關產品:
乳酸杆菌瓊脂培養基(2023版煙酸、生物素測定)-點擊查看產品詳情
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