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在分離特定的目標菌時，若樣品中存在較多的幹擾菌，直接分離會比較困難，而選擇性增菌培養基的主要作用是盡可能抑製雜菌的生長，讓目標菌得到較多的增殖，逐漸稱為優勢群體，則可以很好的提高檢出率。本次就來講一下選擇性增菌培養基的檢驗與驗收方法。
培養基的出廠檢驗
本次以7.5%氯化鈉肉湯為例進行講解
1.混合菌的接種：在試管中接種10-100CFU的金黃色葡萄球菌和1000-5000CFU的大腸埃希氏菌，可將金黃色葡萄球菌製成約10-100CFU/mL的菌懸液，大腸埃希氏菌製成約10000-50000CFU/mL的菌懸液，吸取0.9mL金黃色葡萄球菌菌液及0.1mL大腸埃希氏菌菌液至7.5%氯化鈉肉湯中，金黃色葡萄球菌菌液可直接使用TSA傾注計數接種量，大腸埃希氏菌菌液需進行百倍稀釋後，吸取1mL菌液用TSA傾注計數接種量。將接種後的培養基置36±1℃培養18-24h。
2.非目標菌的接種：吸取1mL 1000-5000CFU/mL非目標菌菌懸液加入至待測培養基試管中，接種2支平行，置於標準中規定的條件下進行培養。
3.混合菌培養液的接種：用10μL接種環挑取1環培養後的7.5%氯化鈉肉湯混合菌測試管的培養液，劃線到Baird-parker瓊脂平板上，每支試管劃1個平板，36±1℃培養24-48h。
4.非目標菌培養液的接種：吸取10μL經培養後的非目標菌培養液，塗布或傾注法接種到非選擇性平板（如TSA）上。同時每管接種一個平板，並按標準規定的培養條件培養平板。
5.結果判定：混合菌接種選擇性平板上的典型特征菌落數應＞10CFU，非目標菌在非選擇性平板上菌落數應＜100CFU。
培養基的驗收方法
將質控菌株接種至非選擇性肉湯培養基中過夜培養，稀釋至10-3，也可采用其他方法製備含菌量105-107CFU/mL的菌懸液，使用1μL接種環挑取1環菌液，接種至待測培養基中，置於標準規定的條件進行培養。
結果判定：接種目標菌的試管濁度值應達到2，接種非目標菌的試管濁度應為0或1。